Шевцов А. А. - Ветеринарная паразитология

Меры борьбы и профилактика. Для предупреждения заноса в благополучные рыбоводные хозяйства ихтиоф-тириозной инвазии необходимо соблюдать общие профилактические мероприятия.

В неблагополучных хозяйствах выполняют карантинные меры, изолированно выращивают прудовых рыб разного возраста, производителей удаляют из нерестовиков через сутки после окончания нереста, усиленно кормят мальков.

Пруды, в которых наблюдалось заболевание рыбы их-тиофтириозом, освобождают от воды и осушают в течение десяти дней, а мокрые участки дезинвазируют негашеной известью (25 ц на 1 га).

БАЛАНТИДИОЗ СВИНЕЙ

Балантидиоз свиней вызывается двумя видами инфузорий: Balantidium suis и Balantidium coli из сем. Burcharidae.

Излюбленное место локализации балантидий — толстый кишечник. Свиньи поражаются этой протозойной болезнью повсеместно. Balantidium coli, кроме свиней, паразитирует у человека.

Морфология возбудителей. Балантидни встречаются в вегетативной и инцистированной формах. Вегетативная форма имеет овальное, некрытое ресничками тело, которое достигает 0,05—0,12 мм длины и 0,05 мм ширины. В передней части тела расположены цитостом, ци-тофаринкс, в середине — большое ядро бобовидной формы, сократительная вакуоль, а сзади — цитопиг.

Инцистированная балантидия круглой формы, покрыта двукон-турной оболочкой. Размножаются балантидий простым делением.

Эпизоотологические данные. Балантидиозом чаще болеют поросята и подсвинки весной. Взрослые свиньи являются носителями и распространителями инвазии. Свиньи заражаются балантидиозом алиментарно (с кормом и водой). С фекалиями свиней балантидий в форме цист выделяются во внешнюю среду, где при темШратуре 6— 28° они сохраняют жизнеспособность в течение трех месяцев; они также устойчивы к химическим дезинфекционным средствам, но быстро погибают под влиянием высокой температуры и солнечного света.

Клинические признаки. Инкубационный период равен 1—2 неделям. У поросят 2—3-месячного возраста балан-тидиоз клинически протекает в острой'и хронической формах, часто с симптомами'колита, энтероколита (при острой форме) и гастроэнтероколита (при хронической течении болезни). У больных свиней наблюдается длительный понос, исхудание и общее угнетение, жидкие фекалии вонючие, с примесью слизи и крови. Больные поросята нередко гибнут.

Патологоморфологические изменения. Труп истощен, В толстом кишечнике находят многочисленные кровоизлияния, язвы, фекалии с примесью крови, а также многочисленных балантидий.

Диагноз. Цисты балантидий легко обнаруживаются при исследовании фекалий свиней методом последовательных сливов, а вегетативные формы паразита — при микроскопии мазков из только что выделившихся фекалий и соскобов слизистой толстых кишок (посмертно).

Лечение. При балантидиозе свиней удовлетворительной эффективностью обладают ятрен в дозе 0,05 на 1 кг веса животного, осарсол — 0,03 на 1 кг веса животного на прием два раза в день в течение трех дней подряд, биомицин в 1%-ном растворе по 2—5 мл 3—5 раз ежедневно, синтомицин в виде 10%-ного раствора по 5—6 мл два раза в день в течение 3—5 дней.

Профилактика включает такие меры: соблюдение ве-теринарно-санитарных правил на свинофермах, содержание свиней в теплый период года в лагерях переносного типа, периодическое скармливание поросятам антибиотиков, дезинвазия свинарников горячим 2%-ным раство-_ром едкого натра.

Лабораторно-практическое занятие 30

МИКРОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД ДИАГНОСТИКИ БАЛАНТИДИОЗА СВИНЕЙ

Задание: 1) исследовать пробы фекалий свиней -методами нативного мазка и последовательных сливов;

2) изучить морфологию вегетативных и инцистирован-ных форм балантидий;

3) зарисовать две формы балантидий. Оборудование -и материалы. Микроскопы, предметные и покровные стекла, стаканчики, стеклянные палочки, кюветы, глазные пипетки, физиологический раствор поваренной соли, вода, плакаты, рисунки разных форм балантидий и яиц гельминтов свиней, пробы фекалий от свиней, больных балантидиозом.

Место занятия. Лаборатория эпизоотологии и паразитологии.

Методика проведения занятия. Преподаватель кратко объясняет морфологию вегетативной и ин-цистированной форм балантидий, акцентируя внимание-учащихся на особенностях строения разных форм балантидий, на дифференциальных признаках балантидий и: яиц гельминтов.

Затем учащиеся исследуют свежие фекалии поросят или подсвинков методами нативного мазка с добавлением к кусочку фекалий физиологического раствора поваренной соли (для обнаружений балантидий с ресничками) и методом последовательных сливов (для выявления цист этого паразита).

Обнаруженных балантидий они рассматривают под малым и средним увеличением микроскопа и схематично их зарисовывают. В конце занятия преподаватель проверяет выполнение учащимися заданий.

ТОКСОПЛАЗМОЗ

Возбудитель токсоплазмоза Toxoplasma gondii относится к типу Protozoa, но его положение в системе простейших пока остается неясным. Предложения одних ученых выделить токсоплазму в самостоятельный класс, других — отнести ее к классу жгутиковых не разделяются большинством ученых-паразитологов. Выделено несколько штампов токсоплазм, сходных по морфологическим признакам и антигенным свойствам, но различных по вирулентности.

Токсбплазмозом болеют человек, собаки, кошки, свиньи, крупный рогатый скот, овцы, лошади, кролики, куры и дикие животные.

Морфология возбудителя. Токсоплазма имеет аркоподобную или полулунную форму. Длина паразита 4—7 ц, ширина 2—4 ц. Ядро находится в центре токсоплазмы, занимая '/4 ее тела. Встречается паразит в свободном состоянии и в виде инцистированных форм (псевдоцист) (рис. 79).

Биология токсоплазмы. Единственный способ размножения токсоплазм — деление на две особи, происходящее только в клетках ретикулоэндотелиальной системы (печени, селезенки и др.). Скопление паразитов внутри одной клетки образует псевдоцисты.

Эпизоотологические данные. Токсоплазмоз относится к ириродно-очаговым болезням. Животные и человек заражаются этой болезнью при поедании инвазированных токсоплазмами мяса и молока, при вдыхании возбудителя вместе с пылью, проникновении его через поврежденную кожу и конъюнктиву, передаче инвазии от матери плоду через плаценту, инокуляции паразита кровососущими насекомыми. Значительна роль в распространении токсоплазмоза играют мелкие грызуны и хищные животные. Из организма больного животного (или человека) токсоплазмы выделяются вместе с молоком, выделениями из носовых отверстий и. глаз, фекалиями и мочой.

К токсоплазмозу восприимчивы животные разных возрастов, однако тяжелее переболевает молодняк,иногда со смертельным исходом. Человек нередко заражается токсоплазмозом от домашних животных (собак и др.). Токсоплазмы во внешней среде быстро погибают.

Клинические признаки. Различают острую, подострую « хроническую формы болезни, а также токсопдазмоноси-тельство у животных.

Острая форма характеризуется лихорадкой, гепатитом, энцефалитом, конъюнктивитом, пневмонией и нередко заканчивается смертельным исходом.

При подострой форме в сильной степени поражаются глаза (некроз сетчатки, атрофия зрительного нерва) и центральная нервная система (судороги, гидроцефалия). При хронической форме поражение центральной нервной системы и глаз менее выражено. У части животных токсоплазмоз клинически не проявляется, а протекает в виде носительства возбудителя инвазии.

У человека регистрируют две формы токсоплазмоза: врожденный (заражение плода в утробе матери) и при-442

Рис. 79. Схема строения токсо-плазмы (электронная микроскопия) :

/ — коноид; 2 — фибриллы; S — аппарат Гольджи; 4 — токсонеми; 5— ядрышко; 6 — ядро; 7 — мигохонд* рии.

обретенный (заражаются и болеют разные возрастные группы людей).

Диагноз. Токсоплазмоз диагностируют серологическим (РСК) и аллергическим (кожная проба).методами. Подсобную диагностическую роль играют исследования дна глаза (хориоретинит), спинномозговой жидкости (изменяется состав ликвора), крови (эозинофилия и лейкопения). Для установления диагноза на токсоплазмоз посмертно готовят мазки из плевральной и перитонеальной жидкостей и окрашивают их, а также делают гистологические срезы из пораженных органов.

Лечение. Для лечения людей, больных -токсоплазмозом, рекомендуют хлоридин в сочетании с сульфаниламидными препаратами.

Лечение и профилактика токсоплазмоза животных не разработаны.

Бесноитиоз

Бесноитиоз — мало изученное протозойное заболевание крупного рогатого скота (реже других сельскохозяйственных животных), возбудитель которого Besnoitia bes-noiti до настоящего времени еще не отнесен к определенному классу (неясное систематическое положение паразита).

На территории СССР впервые зарегистрировано это заболевание в 1959 г. Б. П. Всеволодовым (Казахстан).

Видимо, оно и ранее регистрировалось не только в Казахстане как «злокачественная экзема», «неизлечимая чесотка».

Цисты бесноитий локализуются в слизистой и серозной оболочках и в коже.

Люди не болеют бесноитиозом.

Эпизоотологические данные. Болезнь чаще регистрируется в поймах заросших водоемов Казахской ССР, где в летний период обитает большое количество кровососущих насекомых (гнус). Более восприимчив к бесноитио-зу крупный рогатый скот в 1'/2—2-летнем возрасте независимо от пола и породы.

Клинические признаки. Инкубационный период при искусственном заражении скота длится от 6 до 45 дней. Болезнь может протекать в острой и хронической формах. , При острой форме наблюдается перемежающаяся лихорадка (повышенная на 0,5—1,5° температура тела держится 3—6 дней), пониженный аппетит, учащенные пульс и дыхание, увеличение поверхностных лимфоузлов (пред-лопаточных и других). Позднее отмечаются ринит, подкожные отеки на конечностях, голове, подгрудке, а также мошонке (у самцов). Кроме того, у.быков — орхитыг импотенция и утрата способности к воспроизводству; у самцов и самок нередко поражаются глаза (диффузный склерит — на склере цисты с маковое зерно).

Для хронической формы бесноитиоза характерны исхудание, сухой дерматит (чаще на местах отеков), выпадение волос, поверхностные язвы. Возможны смертельные случаи (иногда до 10%).

Патологоморфологические изменения. При вскрытии трупов крупного рогатого скота обнаруживают такие па-тологоанатомические изменения: серые цисты (паразитарные цисты) в подкожной клетчатке, на слизистой оболочке носовой полости, склере, утолщение кожи в 3—5 раз и лимфоузлов.

Диагноз. При жизни животного боле'знь распознают на основании эпизоотологических данных (заболевает крупный рогатый скот в полупустынной зоне, преимуще-' ственно в поймах рек с зарослями камыша), клинической картины (дерматит, цисты на склере) и лабораторных исследовании, а посмертно — при вскрытии трупов животных и выявлении ци'ст в подкожной клетчатке.

Бесноитий можно обнаружить в цистах склеры и в-мазках крови (между эритроцитами) после окраски препаратов по методу Романовского и микроскопии их при увеличении в 600—800 раз (паразиты полулунной формы с ядром).

Беснонтиоз необходимо дифференцировать от чесоткк (на основании обнаружения разных по величине и форме возбудителей этих болезней).

Меры борьбы и профилактика. Лечение не разработано. В соответствии с методическими указаниями по диагностике и мерам борьбы с бесноитиозом крупного рогатого скота (1967 г.) следует проводить следующие профилактические мероприятия:

1) соблюдать карантинные меры;

2) своевременно выявлять больных животных и направлять их на убой;

ЗУ проводить дезинсекцию и дезинфекцию помещений и территорий лагерей и тырловок скота 3%-ным раствором хлорофоса или сухой хлорной известью;

4) проводить мелиоративные и гидротехнические работы (улучшение прибрежной части водоемов);

5) выпасать скот ночью;

6) проводить борьбу с гнусом (слепнями, комарами, мошками и мокрецами), возможно, имеющими существенное значение в переносе инвазии;

7) мясо и другие пищевые продукты от больных животных направлять в техническую утилизацию (переработка на кормовую муку).

Контрольные вопросы

1. По каким признакам различаются инфузории и жгутиковые?

2. В каких органах у животных обитают паразитические инфузории?

3. Как размножается возбудитель ихтиофтириоза рыб?

4. Какие клинические признаки и Патологоморфологические изменения наблюдаются при балантидиозе свиней?

5. Как заражаются токсоплазмозом человек и животные?

Приложение

Рис. 80. Локализация стационарных паразитов у крупного рогатого скота:

/ — Thelazia rhodesi, Т. gulosa; Т. skrjabini; 3 — Coenurus cerebralls (larvae); 3 — Onchocerca gutturosa; 4 — Fasciola hepatica, F. gigantica; 5 — Cy-sticercus tennicollis (larvae); 6 — Paramphisfomum ichikowai; 7 — Moniezia exranansa; M. beneleni; S—thysaniezia giardl; 9—Awitellina centripynstata; 10 — Strongyloides papillosus; // — Neoascarls vitulorum; 12 — Hypoderma bovis, H. lineatum (larvae); 13 — Psoroptes equi var. bovis; 14 — Trichomo-nas foetus; 15 — Eimeria smithi, E. zflrni; IS — Oesophagostomum radiatum; 17 — Toxoplasma gondii; 18 — Onchocerca lienalis; 19 — Dicrocoelium lan-ceafum; 20 — Cysticercus bovis (larvae); 21 — пироплазмиды; 22 — Echino-coccus granulosus (larvae); 23 — Dictyocaulus viviparus; 24 — Demodex bovis; 25 — Haematopinus eurysternus; 26 — Chorioptes bovis.

Рис. 81. Локализация стационарных паразитов у овец: / — Acarus siro var. ovis; 2 — Oestrus ovis (larvae); 3 — Coenu-rus cerebralis (larvae); 4 — Trichodectes ovis; 5 — Muellerius capil-laris, Protostrongylus kochi; 6 — Fasciola hepatica F. gigantica; 7 — Moniezia expansa, M. benedeni; 8 — Thysaniezia giardi; 9 — Avitellina centripunctata; 10 — Paramphistomum ichikowai; 11— Psoroptes equi var. ovis; 12 — Melophagus ovinus; 13 — Oesopha-gostomum columbianum; 14 — Chabertia ovina; 15 — Toxoplasma-gondii; 16 — Trichostrongylidae; 17 — Dicrocoelium lanceatum; 18 — Cysticercus tenuicolis (larvae); 19 — Dictyocaulus filaria; 20 — Echinococcus granulosus (larvae); 21 — Chorioptes ovis»

Рис. 82. Локализация стационарных паразитов у свиней: J — Acarus siro var. suis; 2 — Metastrongylus elongatus, M. pudendotecfus, 'M. salmi; 3 — Trichinella spiralis (larvae); 4 — Fasciola hepatica; 5 — Dicrocoeli-um lancealum; 6 — Strongyloides ransomi; 7 — Ascaris suum; S — Trichocephalus suis; 9 — Oeophagostomum dentatum; 10 — Balantidium suis; 11 — Toxoplasma gondii; 12— Macracanthorhynchus hirudinaceus; 13 — Opisthorchis felineus; .14 — Cysticercus tenuicolljs (larvae); 15 — Cysticercus cellulosae (larvce); IS — Echinococcus granuolosus (Jarvae); 17 — Haematopinus suis.

Рис. 83. Локализация стационарных паразитов у лошадей:

1 — Rhinoestrus purpurenus (larvae); 2 — Psoroptes equi var. equi; 3 — Onchocerca cervicalis; 4 — Parafilaria multipapillosa; 5 —Fasciola hepatica; 6 — Dicrocoelium lanceatum; 7 —Асагиэ siro var. equi; S — Anoplocephala magna; 9 — Parascaris equorum; 10 — Strongylidae; II — Oxyuris equi; 12 — Gastrophilus 'haemorrhoidalis (larvae); 13 — Trypanoso-ma eqtiiperdum; it — Gastophilus intestinalis (larvae); 15 — Drasche'4 megasto-:ma; 16 ~ Habronema muscae; H. microstoma; /7—Piroplasma caballi; 18 — Nut-tallia equi; 19 — Haematopinus macrocephalus; 20 — Trichodectes pilosus; .21 — Chorioptes equi.

Рис. 84. Локализация стационарных паразитов у собак: / — Demodex canix; 2 — Trichinella spiralis (larvae); 3 — Opislhorchis fe-lineus; 4 — Toxocara canis; 5 — Toxascaris leonina; 6 — Ancylostoma ca-ninum; 7 — Uncinaria stenocephala; 8 — Echinococcus granulosus; 9 — Al-veococcus multiloculatis; 10 — Multiceps multiceps; II — Toxoplasma gon-dii; 12 — Dicrocoelium lanceatum; 13 — Piroplasma canis; 14 — Tricho-desfes canis.

Рис. 85. Локализация стационарных паразитов у кроликов:

/ — Psoroptes equi var. cuniculi; 2 — Fasciola hepatica; 3 — Cysticercus pisiformis; 4 — Passalurus ambiquus; 5 — Eimeria magna, E. perforans; 6 — Dicrocoejium lanceatum; 7 — Eimeria stiedae; 8 — Toxoplasma gondii; S — Notoedres cati.

Рис. 86. Локализация стационарных паразитов у кур: / — Menopon trigonocephalum; 2 — Ascaridia galli; 3 — Raillieti-na tetragona, R. echinobothrida; '4 — Prosthogonimus cuneatus, P. ovatus; 5 — Hypoderaeum co-noideum; 6 — Heterakis gallina-rum; 7 — Eimeria tenella; 8 — Echinostoma revolutum; 9 —Cne-midocoptes mutans; 10 — Toxo-plasma gondii; // — Davainea proglottina.

Рис. 87. Локализация стационарных паразитов у уток. / — Menoponidae; 2-Hysttichis tricolor; 3 — Echinu-ria uncinata; 4 — Streptocara crassi-cauda; 5 — Porro-coecum crassum; S — Echinostomati-dae; 7 — Hymeno-lepididae; 8 — Prosthogonimus pellu-cidus; 9 — Gangu-leterakis dispar; 10 — Toxoplasma jondii; // — Ligula intestinalis, Dig-ramma interrupta; 12 — Polymorphus magnus; 13 — Fi-licollis anatis; 14— Tetrameres fissis-pima.