MedBookAide - путеводитель в мире медицинской литературы
Разделы сайта
Поиск
Контакты
Консультации

Шевцов А. А. - Ветеринарная паразитология

22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42
<<< НазадСодержаниеДальше >>>

Споры нозем способны долго сохранять жизнеспособность в высохших испражнениях пчел до двух лет, в высохших трупах пчел — до одного года, в меде — до 258 дней, в воде — до 113 дней. Неустойчивы споры нозем к термическим факторам, парам формалина и растворам едкого натрия.

Клинические признаки. Различают явную, стертую и 'дремлющую формы болезни. Для явной формы характерны: беспокойство (шум) пчел зимой, понос, плохой облет весной (пчелы ползают около улья); соты, вставные доски, планки рамок и передняя стенка улья испачканы испражнениями больных пчел в виде темных корок с запахом нюхательного табака и на дне улья трупы пчел.

Диагноз. Нозематоз диагностируют на основании клинических данных и микроскопии водной суспензии растертого кишечника больных или трупов пчел (обнаруживаются споры ноземы в виде овальных телец). У больных нозематозом пчел средняя кишка серовато-белого цвета, увеличена в объеме.

Нозематоз следует дифференцировать от незаразного поноса пчел (отсутствует возбудитель), химического токсикоза (обнаруживают яд).

Меры борьбы и профилактика. Лечебным и профилактическим действием при нозематозе пчел обладает ф у-магйллин, применяемый весной в дозе 0,04—0,05 (8— 10 мл 0,5%-ного спиртового раствора) на 1 л сахарного сиропа при даче его по 150 мл на каждую улочку пчел четыре раза с промежутком в семь дней. В теплый период года (весной) пчел пересаживают в чистый улей. Зараженные ульи и вставные доски механически очищают, моют 2%-ным горячим щелоком и после обсыхания обжигают огнем паяльной лампы. Соты без меда и перги (цветочной пыльцы) и ульи можно дезинвазиро-вать парами или 4%-ным водным раствором формалина, после чего улей проветривают. Для уничтожения запаха формалина соты опрыскивают 1%-ным раствором нашатырного спирта. При нозематозе зимой практикуют облет пчел в теплой комнате (при 25°) в течение 3—4 часов.

Важное профилактическое значение имеют создание пчелам хороших условий содержания и кормления зимой, периодическое обновление пчелиных семей и ежегодная смена маток, борьба с бродяжничеством и воровством пчел, лабораторное исследование больных пчел.

ТРИХОМОНОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

Возбудитель — биченосец Trichomonas foetus из сем. Trichomonatidae. Паразитируют трихомонады в половых путях коров и быков.

Трихомоноз крупного рогатого скота причиняет большой ущерб скотоводству.

Морфология возбудителя. Trichomonas foetus относится к сравнительно крупным простейшим (до 30 ц длины): тело его овальной или -грушевидной формы. От переднего края отходят три жгутика, направленных вперед, а четвертый, окаймляя волнообразную перепонку, заканчивается в задней части тела свободным концом. У основания жгутиков расположены мелкие ядра (блефаропласты), ядро, несколько сбоку от них — цитостом (органоид ротового отверстия), в -средней части аксостиль (осевая пластинка), а также вакуоли в протоплазме (рис. 77). Размножаются трихомонады простым делением « организме животного и на искусственных питательных средах.

Рис. 77. Строение трихомонады:

/ — передние жгутики; 2 — задний жгутик; 3 — ундулирующая мембрана; 4 — краевая нить; 5— цитостом; 6 — ядро; 7 — вакуоль в протоплазме; S — опорный стержень; 9 — включение в протоплазме.

Эпизоотологические данные. Жи« вотные заражаются трихомонозом преимущественно при случке, а также через инвазированные подстилку, предметы ухода и инструменты для искусственного осеменения. Иногда заражается трихономозом молодняк при контакте с больными коровами шш быками. Не исключается возможность механического переноса мухами трихомонад от больного к здоровому животному.

Основную роль в распространении трихомоноза играют зараженные быки-производители.

Трихомонады устойчивы к антибиотикам. В гнойном секрете и навозе они сохраняют жизнеспособность от 12 до 18 дней.

Некоторые инфекционные болезни (инфекционный фолликулярный вестибулит) способствуют заражений крупного рогатого скота трихомонозом и более тяжелому клиническому проявлению этих двух заразных болезней.

Клинические признаки. У коров различают четыре формы клинического проявления- трихомоноза: катараль-но-гнойный вестибуловагинит, катарально-гнойный эндометрит* ранний аборт (на 1—3-м месяце стельности) и пиометра (скопление гнойного экссудата в полости матки). В первый период отмечается покраснение и припу-хание слизистой оболочки преддверия влагалища, слизистое истечение, наличие мелкой сыпи («терки») на нижней и боковых стенках влагалища. При наличии пиометры ухудшается общее состояние и снижается удой у больных коров. У быков трихомоноз часто протекает субклиниче-ски (отсутствуют выраженные симптомы болезни).

Диагноз устанавливают на основании клинико-гине-кологических данных и лабораторных исследований (микроскопии слизи и культивирования трихомонад). В лаборатории исследуют слизь из половых органов, маточное выделение, плодовые оболочки, абортированные плоды и сперму быков. Слизь из влагалища у чкоров берут при помощи ложки-катетера, а из препуция у быков — скарификатором конструкции Г. К. Корчака, 430

Микроскопия нескольких свежих капель взятой слиз» от животного более эффективна по сравнению с исследованием фиксированных и окрашенных мазков (под средним увеличением микроскопа).

В районных и областных ветеринарных лабораториях, широко практикуют культивирование трихомонад (куль-туральный метод диагностики) по Маркову и Петровскому. Результаты посева материала на печеночном бульоне с мальтозой проверяют через 48—72 часа. При наличии трихомонад среда мутнеет и появляется небольшо» осадок на дне пробирки.

Иногда применяют аллергический метод диагностики" трихомоноза. От внутрикожного введения антигена образуется утолщение кожной складки более чем на 5 мм. Трихомоноз необходимо дифференцировать от инфекционного вагинита и вибриоза крупного рогатого скота. При инфекционном вагините поражается только влагалище, причем узелки находятся в области клитора, отсутствуют аборты у больных коров. Вибриозом наряду Co-взрослыми животными болеет и молодняк, аборты чаще наблюдаются в среднем периоде стельности, возбудитель-спирохетовидной формы часто обнаруживается во влагалищной слизи коров и в содержимом сычуга плода.

Кроме того, трихомонад следует отличать от других-простейших (Bodo, Cercomonas и др.), имеющих менее четырех жгутиков.

Лечение. Больных и подозреваемых в заболевании» трихомонозом коров (слученных с больным быком) изолируют и лечат. Остальных взрослых животных исследуют на трихомоноз.

Удовлетворительные результаты получают при однократном внутривенном введении очищенного нага-н ин а в дозе 0,05 на 1 кг веса животного в 10%-ной концентрации на физрастворе, трехкратных подкожных инъекциях прозерина в дозе 0,002 в 0,5%-ном растворена дистиллированной воде с промежутком в один день или трехкратном подкожном применении 1%-ного раствора карбахолина с промежутком в один день (максимальная доза препарата Q,006).

Для местной обработки половых органов коров используют раствор фурациллина (1 :5000), 5—8%-ный раствор ихтиола, растворы йода (1:1000), аммаргена> (1 : 20000—1 : 2500), 0,25%-ную эмульсию мыла К и другие препараты в теплом виде.

Установлена высокая эффективность метронидазола ^трихопола) (В. 3. Решетник). Больным коровам в полость матки вводят 25 мл 1%-ного раствора этого препарата, а слизистую оболочку шейки и влагалища смазывают 1%-ным масляным раствором метронидазола. Иногда лечение повторяют через 24 часа. Больных быков можно лечить по следующей схеме: в первый и третий (иногда на пятый) день утром и вечером внутримышечно вводят по 2,5 метронидазола в 30 мл стерильного физиологического раствора. После промывания препуцио-гчального мешка раствором фурациллина (1:5000) его полость смазывают 1%-ным масляным раствором метронидазола. Через пять дней необходимо провести контрольные исследования.

Для обеззараживания спермы быков-производителей к 9 мл разбавленной спермы добавляют 1 мл раствора метронидазола (к 25 мл физиологического раствора добавляют 0,25 этого препарата и 0,25 крахмала). Коров осеменяют обработанной спермой через I'/a—2 часа.

После проведенного курса лечения против трихомоноза животных (коров) осеменяют искусственной спермой здорового быка-производителя. Быков, больных три-хономозом, лечат редко (чаще их выбраковывают и сдают на. убой).

Профилактика. Важнейшим профилактическим мероприятием при трихомонозе крупного рогатого скота яв-'ляется искусственное осеменение коров, принадлежащих колхозам, совхозам и индивидуальному сектору, спермой здоровых быков-производителей. Одновременно периодически проводят клинический осмотр коров и лаборатор~ ное обследование быков-производителей, а также соблюдают ветеринарно-санитарные меры на животноводческих фермах.,

В СССР с каждым годом снижается зараженность крупного рогатого скота трихомонозом.

Трипанозомозы

СУ-АУРУ ВЕРБЛЮДОВ И ЛОШАДЕЙ

Су-ауру («водяная болезнь») вызывается трипанозо-мой Trypanosoma ninae kohl-jakimovi, паразитирующей в плазме крови верблюдов, лошадей, ослов, а также со- бак и крупного рогатого скота. К этой болезни воспри* имчивы почти все лабораторные животные.

"Н^збудитель су-ауру — сравнительно крупная трипа-нозома (до 27 |.i длины) с удлиненно-веретенообразным телом, состоящим из протоплазмы, большого и малого ядер, волнообразной перепонки и одного жгутика. Три-панозома от больных к здоровым животным механически передается кровососущими насекомыми (слепнями и др.) и во время прививок нестерилизованными иглами. Собаки заражаЪтся при поедании мяса павших или вынужденно убитых животных. Более тяжело болеют этим три-панозомозом взрослые животные.

Клинические признаки. Инкубационный период равен 2—3 неделям. Су-ауру протекает в острой, подострой и хронической формах. У больных животных отмечают лихорадку (40—41°) перемежающего типа, уменьшение аппетита в периоды подъема температуры, вялость, сильную потливость, увеличение лимфатических узлов, анемичность слизистых оболочек, истечение из носовых отверстий и глаз, исхудание, отеки, нервные явления (резкое угнетение или возбуждение, парезы задней части тела). У больных наблюдается гелиотропизм (поворачивание головы к солнцу). При отсутствии ветеринарной помощи падеж животных может быть высоким (до 50%). Диагноз.хДля установления диагноза на су-ауру используют клинические (отеки) и эпизоотологические данные (заболевание животных в период лёта кровососущих насекомых), серологические (формалиновая реакция у верблюдов и РСК у лошадей), микроскопические (исследование под микроскопом мазков крови) и биологические методы (заражение лабораторных животных с последующим исследованием их крови в течение 25—

30 дней).

Для постановки формалиновой реакции к 1 мл сыворотки крови больного верблюда добавляют две капли неразведенного формалина. После смешивания содержимого в пробирке ее ставят в термостат на одни сутки (температура 36—38°). При положительной реакции жидкость в пробирке приобретает желеобразную консистенцию (не вытекает из пробирки).

При отрицательной реакции содержимое пробирки жидкое (легко выливается из пробирки). Положительная формалиновая реакция должна быть подтверждена микроскопически.

Су-ауру необходимо дифференцировать от случной болезни, которая регистрируется в виде спорадических случаев во всех широтах: возбудитель болезни обнаруживается в соскобах со слизистой оболочки полов; х органов, лабораторные животные не заражаются.

Лечение. Лошадям применяют наганин внутривенно (0,01—0,015/кг' в 10%-ном растворе). Верблюдам технический наганин можно вводить внутривенно в повышенной дозе (0,06—0,07 на 1 кг веса). Эффективными средствами также являются фурациллин в дозе 0,1—0,15 на 1 кг веса животного в форме водной суспензии внутрь и антрацид — 0,01 на 1 кг веса животного в водной суспензии подкожно.

Профилактика. Необходимо уничтожать кровососущих насекомых (стр. 326), изолировать трипанозомо-носителей от слепней в неблагополучных хозяйствах, подвергать химиопрофилактической обработке верблюдов и лошадей наганином, стерилизовать иглы во время инъекций лечебных препаратов и прививок, утилизировать трупы животных, павших от су-ауру. ,

Костиоз рыб

Возбудитель костиоза рыб — биченосец Costia песа-trix из сем. Monatidae, паразитирующий на коже и жабрах рыб.

Костиоз рыб чаще регистрируют в южных районах страны, где он причиняет существенный ущерб рыбоводным хозяйствам.

Морфология возбудителя. Costia necatrix — средней величины биченосец (10—20 ц длины), почковидной (с вентральной стороны) или клиновидной (с боку) формы. Передний конец утолщенный, задний снабжен двумя жгутиками, при помощи которых паразит прикрепляется к коже рыб. На вентральной стороне имеется желоб, на дне которого расположено ротовое отверстие. В середине кости и находятся большое ядро и вакуоли (рис. 78). При неблагоприятных условиях паразит способен образовать цисту до 10 ц в диаметре. Размножается костиа простым делением.

Эпизоотологические данные. Костиозом поражается молодь (до. двухмесячного возраста) сазана, карпа, линя, карася, форели, густеры, лосося, а также аквариумных рыб. Годовики не болеют, но являются носителями инвазии. Массовое размножение костий происходит при температуре 25—28°. Большой устойчивостью обладают цисты костий. Они могут находиться на коже и жабрах, а также и на дне водоема. Нередко инвазируют пруды

Рис. 78. Costia necatrix:

/ — вид с брюшной стороны; а — ядро; б — вакуоль; в — жгутики; 2 — вид сбоку; 3 — циста; 4 — костиоз на коже рыбы.

озерно-речные рыбы, в которых болезнь протекает более доброкачественно. У взрослых рыб развивается естественный возрастной иммунитет.

Клинические признаки. Характерный симптом костиоза рыб — слизистый налет голубоватого цвета, ясно за-метный'на коже рыб, находящихся в воде. При переходе костий на жабры отмечается массовая гибель молоди рыбы. Длительность болезни около одной недели.

Диагноз устанавливают на основании клинических признаков (голубой налет на коже) и микроскопического исследования слизи с кожи и жабр больной рыбы.

Костиоз следует дифференцировать от гиродактилеза рыб, при котором поражаются не только мальки, но и годовики карпа и сазана и резко отличается возбудитель.

Меры борьбы и профилактика. Поступающие в рыбхозы производители должны пройти 20-дневный карантин, в конце которого микроскойируют слизь. В случае обнаружения костий производителей пропускают три раза через ванны с 5%-ным раствором поваренной соли с интервалом в 5—8 дней. Для уничтожения костий можно также применять аммиачные ванны в концентрации 0,1 % три температуре 19—25° в течение 30 секунд. Установление в прудах заградительных решеток задерживает проникновение в прудовое хозяйство озерно-речной рыбы. Мальков пересаживают из нерестовиков в выростные пруды не позднее 5—7 дней после выхода их из икры.

Через антипаразитарные ванны с 5%-ным раствором поваренной соли также пропускают сеголеток перед посадкой их на зимовку и годовиков карпа до перевода в нагульные пруды. Рассредоточенное содержание мальков, своевременная их подкормка способствуют сохранению молоди рыбы.

В неблагополучных по костиозу рыбопитомниках следует также практиковать метод летования прудов (вре-.менное осушение).

Лабораторно-практическое занятие 29

МИКРОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД ДИАГНОСТИКИ ТРИХОМОНОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

Задание: 1) изучить морфологию трихомонады и схематично зарисовать ее;

2) освоить технику взятия материала для лабораторного исследования на трихомоноз от коров и быков-производителей.

Оборудование и материалы. Ложка-катетер, скарификатор, ложки Фолькмана, уретральные ложки, предметные и покровные стекла, бактериологические чашки, микроскопы, пипетки, скальпели, ножницы, иглы, вата, спирт, физиологический раствор, окрашенные препараты трихомонад и трипанозом, плакаты с рисунками жгутиковых, коровы, быки и лабораторные животные (белые мыши).

Место занятия. Станция по борьбе с болезнями животных.

Методика проведения занятия. Преподаватель кратко объясняет строение жгутиковых, обращая внимание учащихся на морфологические различия у трихомонад и трипанозом, а также излагает методику взятия материала для лабораторного исследования на трихомоноз. Вначале учащиеся исследуют под микроскопом постоянные (окрашенные) препараты паразитических простейших и схематично зарисовывают трихомонаду. . После выполнения первой части задания учащиеся разделяются на звенья. Каждому звену преподаватель поручает определенную работу по взятию материала для лабораторного исследования на трихомоноз от коров и быков-производителей.

Каждое звено демонстрирует всей группе учащихся технику выполнения задания.

В заключение учащиеся микроскопируют взятый материал с целью обнаружения живых паразитических жгутиковых (трихомонад).

Контрольные вопросы

1. По каким морфологическим признакам жгутиковые отличаются от споровиков?

2. Какие характерные клинические признаки наблюдают у" больных трихомонозом коров?

3. На основании каких данных устанавливают диагноз на трихомоноз крупно- рогатого скота?

4. Как заражаются животные су-ауру?

5. Как дифференцировать су-ауру от случной болезни?

6. Какие лечебно-профилактические мероприятия проводят при костиозе рыб?

Глава XV цилиатозы и болезни, вызываемые простейшими с неясным систематическим положением

Инфузории — обширная группа наиболее сложно организованных простейших, относящихся к классу Ciliata.

Тело инфузорий постоянной формы, покрыто мерцательными ресничками. Внутри тела находятся большое и малое ядро, сократительные вакуоли. У инфузорий также имеются органеллы для принятия пищи (цитостом и цитофаринкс) и для выведения остатков пищи (цитопиг).

Размножаются инфузории делением на две особи, которому часто предшествует конъюгация (оплодотворение). При неблагоприятных условиях существования обладают способностью образовывать цисты.

Большинство инфузорий ведет свободноживущий образ жизни, и только немногие виды являются паразитами (возбудители ихтиофтириоза рыб, балантидиоза свиней и др.).

Ихтиофтириоз рыб

Возбудитель ихтиофтириоза — инфузория Ihthyophthi-rius из отряда Holodrichida, локализующаяся под эпителием кожи, жабр и роговицы рыб.

В последние годы энзоотические вспышки этой болезни зарегистрированы во многих хозяйствах Белоруссии, РСФСР и Украины.

Морфология возбудителя. Ихтиофтиров относят к очень крупным паразитическим простейшим (от 0,5 до 0,9 мм длины). Тело паразита округлой формы, покрыто многочисленными мелкими ресничками. Большое ядро подковообразной формы. Цитостом находится в передней части тела.

Биология паразита. Ихтиофтиры размножаются во внешней среде. При разрушении бугорков на теле рыб инфузории попадают на дно водоема, где прикрепляются к предметам и растениям и инцистируются (покрываются оболочкой). Внутри цисты ядро многократно делится, образуя до 250 молодых (дочерних) паразитов, которые выходят в воду и заражают рыбу. При температуре 16— 22° ихтиофтиры развиваются в течение 7—8 суток (1—= 2 суток во внешней среде и 5—6 суток в рыбе).

Эпизоотологические данные. Поражаются ихтиофти-риозом многие виды прудовых рыб (карп, карась, сазан и др.), чаще в молодом возрасте. Болезнь распространяется в других хозяйствах при перевозке зараженных рыб, а также течением воды в нижерасположенные пруды. Ихтиофтиры не размножаются при температуре'воды выше 27° и ниже 2°. Массовое заболевание рыб ихтиофтирио-30м отмечается летом, особенно при скученной посадке.

Клинические признаки. Кожа, жабры и роговица глаз рыб усеяны белыми бугорками, жабры темно-вишневого цвета, кожа местами некротизирована, роговица воспалена. Нередко рыба слецнет.

Диагноз ставят на основании клинических признаков и при микроскопии слизи с кожи и жабр больных рыб.

<<< НазадСодержаниеДальше >>>

medbookaide.ru