Шевцов А. А. - Ветеринарная паразитология

Диагноз при хронической форме болезни прижизненно ставят на основании обнаружения зрелых члеников в помете птиц при исследовании его методом последовательного промывания. Наиболее достоверный — посмертный метод диагностики, позволяющий обнаружить возбудителя заболевания (райетиноза) при вскрытии трупов птиц.

Лечение. Эффективными препаратами являются фи-ликсан, камала, бромистоводородный ареколин и мышь-яковокислое олово.

Филиксан назначают в дозе 0,5 на 1 кг веса птицы групповым методом (в смеси с кормом) 3—7 дней подряд.

К а м алу задают в дозе 1 г на каждую курицу.

Бромистоводородный ареколин вводят внутрь в дозе 0,003 на 1 кг веса в водном растворе 1 : 1000 или 3 мл этого раствора:

Мышьяковокислое олово применяют в желатиновых капсулах через рот в дозе 0,15 на одну курицу.

После ^назначения антгельминтика Птицу в течение двух суток содержат в закрытом птичнике, а выделенные за это время фекалии сжигают.

Профилактика должна быть направлена на предохранение заражения молодняка и взрослого поголовья райе-тинозом. Для молодняка следует отводить помещения и выгульные дворы, удаленные от мест содержания взрослой птицы, практиковать полевое содержание птицы со сменой выпасных участков, птичники регулярно очищать от помета с последующим обеззараживанием его в по-метохранилище.

На птицефермах, неблагополучных по райетинозу, проводят профилактические дегельминтизации: осенью через 2—4 недели после окончания выгульного сезона и весной перед переводом птицы на выгулы (если зимой обнаруживались райетины у павших и вынужденно убитых кур).

Лабораторно-практическое занятие 10

ИЗУЧЕНИЕ МОРФОЛОГИИ ЛЕНТОЧНЫХ ЧЕРВЕЙ ГУСЕЙ,

УТОК И КУР

Задание: 1) изучить строение сколексов, члеников и яиц дрепанидотений гусей, геминолепидид уток и райетин кур;

2) исследовать пробы фекалий от птиц методом последовательного промывания;

3) ознакомиться с циклопами — промежуточными хозяевами дрепанидотений и других геминолепидид гусей и уток.

Оборудование и материалы. Микроскопы, препаровальные лупы, пинцеты, скальпели, бактериологические чашки, предметные и покровные стекла, раствор глицерина, глазные пипетки, наглядные пособия: постоянные препараты сколексов и циклопов; окрашенные препараты гермафродитных и зрелых члеников, законсер-вированные дрепанидотений и райетины.

Место занятия. Лаборатория эпизоотологии и паразитологии.

Методика проведения занятия. Фекалии от птиц разных видов заготовляет лаборант накануне занятия на птицеферме, неблагополучной по цестодозам. Влажные препараты яиц цестод можно приготовить из зрелых члеников дрепанидотений,

Преподаватель кратко знакомит учащихся с характерными морфологическими признаками у представите» лей разных видов, родов и семейств ленточных червей, паразитирующих у птиц, обращая внимание на количество крючьев на сколексе, ширину и длину стробилы, количество семенников, строение матки и другие признаки. У большинства видов птичьих цестод яйца имеют сход-ное строение, характерное для цепней. Учащиеся вначале изучают строение разных частей тела цестод, а затем исследуют фекалии методом последовательного промывания для обнаружения члеников и яиц паразитов. Постоянные или временные препараты циклопов рассматривают обычно под микроскопом (в их теле можно обнаружить личинок ленточных червей птиц — цистицеркои-Дов).

Лабораторно-практическое занятие 11

ГРУППОВАЯ ДЕГЕЛЬМИНТИЗАЦИЯ ВОДОПЛАВАЮЩИХ ПТИЦ ПРИ ЦЕСТОДОЗАХ

Задание: 1) освоить технику групповой дегельминтизации гусей и уток филиксаном;

2) провести гельминтоскопию фекалий птиц после дегельминтизации;

3) составить акт о проведенной дегельминтизации.

Оборудование и материалы. Весы аптечные, разновес, бактериологические чашки, пинцеты, стеклянные банки, ведра, филиксан, отруби или комбикорм, узкие корыта, утки (гуси).

Место работы. Птицеферма колхоза (совхоза), неблагополучного по дрепанидотениозу или другим гиме-нолепидозам.

Методика проведения занятия. Предварительно для дегельминтизации выделяют уток или гусей, которых выдерживают на 12—14-часовой голодной диете. Преподаватель кратко объясняет технику групповой дегельминтизации птиц филиксаном. Учащиеся отвешивают групповые навески антгельминтика для гусей (уток) и смешивают в ведрах с сухим мучнистым кормом из расчета 30—50 г на голову птицы, увлажняют смесь до состояния густой каши, раскладывают в корыта и скармливают птице. Через несколько часов осматривают фекалии гусей и собирают выделившихся дрепанидоте-

'ний. Для обнаружения мелких цестод собранные фекалий целесообразно исследовать методом последовательного промывания в стеклянных банках. В осадке, кроме ленточных червей, часто находят их яйца. Птицу не выпускают из загона или помещения в течение суток.

При отсутствии филиксана для групповой дегельминтизации уток можно применить камалу, а для гусей — муку из тыквенных семян.

После дегельминтизации учащиеся составляют акт, в котором указывают дату и место дегельминтизации, вид, возраст и число обработанных птиц, антгельминтик, его серию, дозы и метод применения и количество израсходованного препарата.

ЛИГУЛЕЗ РЫБ И ПТИЦ

Возбудитель лигулеза — лентец (ремнец) Ligula in-testinalis из сем. Ligulidae, паразитирующий в половозрелой стадии в кишечнике рыбоядных птиц, а в личиночной — в брюшной полости рыб. Лигулез рыб и диких птиц широко распространен в бассейнах Волги, Днепра, Дона, Южного Буга, Дуная и других рек. У домашних уток этот гельминтоз регистрируется редко.

Морфология возбудителя. Лигулы имеют плотное, не разделенное на членики тело. Ligula intestinalis— крупный паразит, белого или желтоватого цвета, от 15 до 100 см длины и 0,5—1,2 см ширины, с заостренными передним и задним концами тела. На переднем конце тела имеются две присасывательные щели, а также внутренняя сегментация гермафродитных и зрелых члеников. В гермафродитных члениках расположены органы половой системы (одинарный половой аппарат), состоящие из семенников, оотипа, желточников, яичника и матки. Три половых отверстия (мужское, вагины и матки) открываются на- вентральной стороне членика. В каждом зрелом членике находится матка открытого типа, содержащая не более 60—70 яиц.

Яйца овальной формы, желтого цвета, 0,045—0,060 мм длины и 0,031—0,033 мм ширины, на одном полюсе имеют крышечку, незрелые. По строению они напоминают яйца трематод, поэтому их называют яйцами трематодного типа.

У рыб и птиц нередко встречается второй вид ремнецов — Dig-ramma interrupta, отличающийся от предыдущего наличием двойного полового аппарата в гермафродитных члениках.

Биология возбудителей. Ремнецы развиваются со сме» ной трех групп хозяев — дефинитивных (птиц), промежуточных (циклопов и диаптомусов) и дополнительных (рыб).

Рыбоядные птицы (главным образом чайки) с поме» том выделяют в воду яйца ремнецов, которые в течение 5—9 дней созревают. Днем крышечка яйца открывается, и в воду выходит корацидий — круглая личинка, покрытая ресничками, способная жить в водной среде 1—2 су-ток. Циклопы и диаптомусы заглатывают корацидиев, из которых через 10—15 дней формируются процерко-

При поедании карповыми рыбами инвазированных низших ракообразных процеркоиды из кишечника проникают в брюшную полость рыб и через 12—14 месяцев превращаются в плероцеркоидов. Здесь они могут паразитировать до 2—3 лет.

Птицы заражаются лигулезом на водоемах двумя пу* тями: при поедании рыбы, инвазированной личинками ремнецов (что наблюдается чаще), или путем заглатыва* ния плероцеркоидов, свободноплавающих в воде (после гибели рыбы). Лигулы в кишечнике птиц через 2—5 дней становятся половозрелыми и начинают откладывать яйца. Срок паразитирования лигул у птиц короткий (от нескольких дней до нескольких недель).

Эпизоотологические данные. Основной источник рас* пространения лигулеза — дикие рыбоядные птицы, способные при перелетах заражать водоемы. Часть рыбы (лещ, тарань, густера, плотва и др.) заражается лигулезом летом. Выраженные клинические симптомы лигу* леза и большой отход отмечаются у рыб в возрасте 3—5

Для прудового хозяйства лигулез не представляет большой опасности, так как карп им не заболевает.

Патогенез и клинические признаки. Крупные плеро-церкоиды сдавливают внутренние органы рыб, в резуль* тате чего отмечают атрофию яичников (бесплодие), печени и других органов. Одновременно развивается исто* щение, уменьшение гемоглобина. Помимо механического действия, личинки лигул на организм рыб действуют ток* сически и, по-видимому, антигенно (аллергически).

Характерные клинические признаки: вздутие брюшка, плавание рыбы в поверхностных слоях воды вверх брюшком или на боку в результате смещения центра тяжести. Иногда наблюдается разрыв брюшной стенки рыбы и вы* ход личинок в воду. В этих случаях рыба быстро погибает. У уток иногда отмечались случаи падежа вследствие закупорки кишечника лигулами.

Диагноз. У рыб лигулез легко диагностируется при вскрытии и обнаружении в брюшной полости плероцер-коидов. Для установления диагноза у уток можно исследовать фекалии методом флотации (прижизненно) или вскрывать трупы.

Меры борьбы и профилактика. При установлении в прудах заболевания рыбы лигулезом воду спускают, рыбу вылавливают, дно осушают и перепахивают. Увлажненные места на территории прудов дезинфицируют негашеной известью из расчета 30 ц на 1 га. В следующем году оздоровленные пруды зарыбляют мальками, свободными от инвазии. Для недопущения диких птиц на пруды проводится скашивание надводной растительности, а также отпугивание диких птиц.

В крупных лиманах и озерах значительное количество больной лигулезом рыбы вместе с травой выбрасывается волной на берега, где она становится легкой добычей домашних уток и диких птиц. Необходимо периодически собирать и уничтожать пораженную рыбу. Разведение судака способствует оздоровлению неблагополучных по лигулезу водоемов.

ТРИЭНОФОРОЗ РЫБ

Возбудитель триэнофороза — лентец Triaenophorus nodulosus — в стадии плероцеркоида паразитирует в печени у многих видов рыб, а в половозрелой стадии — в кишечнике хищных рыб (щуки, судака, окуня и др.).

Триэнофороз широко распространен среди озерных, речных и прудовых рыб и причиняет значительный экономический ущерб рыбоводству в результате большого па« дежа рыбы.

Морфология возбудителя. Половозрелый триэнофорус около 30 см длины, на переднем конце тела имеет две щели и четыре трехзубчатых крючка. Наружная сегментация стробилы выражена слабо. В зрелых члениках матка заполнена яйцами.

Плероцеркоид в передней части тела снабжен такими же органами фиксации, какие имеются у половозрелого паразита.

Биология возбудителя. Возбудитель триэнофороза развивается при участии дефинитивных хозяев (хищных рыб), промежуточных (циклопов) и дополнительных (планктоноядных рыб).

Рыбы-интиофаги (пожирающие рыб) вместе с экскрементами выделяют во внешнюю среду яйца лентеца, из которых в воде выходят корацидии, снабженные реснич* ками и тремя парами эмбриональных крючьев. Кораци-диев заглатывают циклопы. В полости тела промежуточного хозяина корацидии превращается в процеркоида. Если инвазированного циклопа проглотит рыба, то циклоп переваривается, а процеркоид проникает в брюшную полость, а затем в печень и другие органы, где превращается в плероцеркоида.

Хищные рыбы заражаются триэнофорозом при заглатывании более мелкой рыбы, содержащей плероцеркои-дов, из которых в кишечнике вырастают половозрелые ленточные черви.

Эпизоотологические данные. Личиночной стадией три-энофоруса, как правило, заражаются планктоноядные рыбы (основным кормом которых являются низшие ракообразные организмы). Часто болеет триэнофорозом форель в прудах, а окунь, хариус, корюшка, сиг, налим —» в естественных водоемах.

Патогенез и клинические признаки. В результате выраженного патогенного влияния плероцеркоидов на организм форели происходит перерождение паренхимы печени (цирроз), нарушение функциональной деятельности этого органа и гибель рыбы. У окуня и налима болезнь протекает более доброкачественно.

У мальков рыбы, инвазированной плероцеркоидами триэнофоруса, сильно вздутое брюшко и замедленное движение.

Патологоморфологические изменения. В местах локализации плероцеркоидов паразита (в печени, реже в брыжейке, мышцах) обнаруживают соединительнотка-ные капсулы, паренхиматозная ткань печени атрофируется. В отдельных цистах локализуется до нескольких десятков личинок. В кишечнике констатируют локальный воспалительный процесс в местах фиксации половозрелых лентецов.

Диагноз устанавливают при вскрытии мальков и сего» леток и обнаружении плероцеркоидов в печени. Для выявления половозрелых паразитов исследуют хищных рыб.

Меры борьбы. Радикальный метод борьбы — вылов щук — основных распространителей инвазии. Для этого в форелевых хозяйствах устраивают спускные головные пруды. Из неблагополучных по триэнофорозу хозяйств нельзя вывозить мальков.

Ботриоцефалез рыб

Возбудитель ботриоцефалеза рыб — цестода Bothrio-cephalus gowkongensis из отряда лентецов. Локализуют* ся ботриоцефалы в кишечнике рыб (карпа, белого амура, толстолобика и др.)- Часто бывает заражена этим гельминтом рыба на Дальнем Востоке. В европейскую часть СССР ботриоцефалы завезены вместе с рыбой из Китая в пятидесятых годах текущего столетия. В настоящее время ботриоцефалез карпов нередко регистрируют на Украине, в Молдавии и других республиках, где он причиняет значительный ущерб рыбоводству.

Морфология возбудителя. Стробила ботриоцефала достигает 5—35 см длины и состоит из сколекса, снабженного двумя ботридия-ми, шейки и члеников. Яйца овальной формы, серого цвета, с крышечкой на одном полюсе.

Биология возбудителя. Развиваются ботриоцефалы с участием дефинитивных хозяев (рыб) и промежуточных (циклопов). В водоемы попадают незрелые яйца этого паразита вместе с фекалиями рыбы. При благоприятных условиях (в теплый период года) через 3—5 дней внутри яйца формируется личинка первой стадии — корацидий, который покидает яйцевые оболочки и непродолжительное время плавает в воде. Проглоченный циклопом корацидий из кишечника проникает в полость тела, где через 5—7 дней превращается в процеркоид (инвазионную личинку). Молодь рыбы заражается ботриоцефалезом при заглатывании циклопом инвазированных процерко-идами ботриоцефалов. В кишечнике рыбы циклопы пе-ревариваются, а освободившиеся личинки через три недели развиваются в половозрелых паразитов.

Эпизоотологические данные. Степень зараженности рыбы ботриоцефалезом зависит от ее возраста, времени года, количества циклопов в пруду и степени их инвази-рованности. С возрастом экстенсивность ботриоцефалез-ной инвазии карпов постепенно снижается: двухмесячные мальки заражены на 93—100%, годовики — до 37, двухлетки —> до 12,5 и трехлетки —< только на 3—8%. Карпы старше трехлетнего возраста, как правило, не являются носителями ботриоцефалов. Максимальную интенсивность инвазии (до 700 паразитов) отмечают у мальков в середине августа, затем она постепенно снижается.

Патогенез и клинические признаки. Ботриоцефалы оказывают механическое воздействие на организм больных рыб, вызывая воспаление слизистой оболочки, частичную или полную закупорку кишечника и токсическое влияние. В результате болезнетворного действия паразита у рыб отмечают уменьшение подвижности, поедаемо-сти корма, увеличение брюшка, бледность жабр, истощение, ускорение РОЭ и снижение в крови количества эритроцитов.

Диагноз ставят при вскрытии рыб и обнаружении в кишечнике возбудителя болезни. Этот гельминтоз необходимо дифференцировать от кариофилеза, возбудитель которого имеет нечленистую стробилу меньшего размера.

Меры борьбы и профилактика. Удовлетворительный лечебный эффект при ботриоцефалезе карпов оказывает фенотиазин из расчета 0,08—0,1 на одну сеголетку весом 15—18 г; препарат задают трехкратно с кормом с интервалами между дачами 2—3 дня.

В неблагополучных по ботриоцефалезу хозяйствах вводят ограничительные мероприятия на период их оздоровления от этой инвазии.

Лечение карпов можно применить в изолированных прудах осенью перед посадкой сеголеток в зимовальники или весной до перевода рыбы в нагульные пруды.

В случае появления ботриоцефалеза рыб в данной местности впервые всех пораженных мальков вылавливают и скармливают в проваренном виде свиньям или птице. Неблагополучные пруды обеззараживают по схеме лето-вания методами просушивания, мелиорации, перепахивания дна и известкования мокрых мест из расчета 25 ц извести на 1 га.

Контрольные вопросы

1. По каким признакам отличают цепней от лентецов?

2. Какими цестодозами могут заразиться сельскохозяйственные животные и человек от плотоядных животных?

3. Какие клинические признаки наиболее характерны при ценурозе овец?

4. Какие антгельминтики применяют для дегельминтизации собак и пушных зверей при цестодозах?

5. В какой период года может происходить массовое заражение ягнят мониезиозом?

6. На каком принципе основана преимагинальная дегельминтизация?

7. В чем заключается химиопрофилактика мониезиоза овец?

8. Какие антгельминтики рекомендованы для группового применения при цестодозах птиц?

9. Какую роль играют дикие птицы в распространении лигулеза?

10. Какие профилактические мероприятия используют в борьбе с триэнофорозом и ботриоцефалезом рыб?

Глава VI нематодозы

Нематодозы относятся к группе гельминтозов, вызываемых многочисленными видами гельминтов из класса круглых червей, или нематод (Nematoda). В отличие от трематод, маногеноидей и цестод не все нематоды паразитируют у животных. Значительная часть круглых червей ведет свободный образ жизни, обитая в почве, водоемах, в подстилке для животных. Некоторые виды круглых червей приспособились к паразитированию у растений (галловая нематода и др.).

Краткая характеристика нематод. Строение нематод. Круглые черви, как показывает само название, имеют удлиненное тело веретенообразной или цилиндрической формы, круглое на поперечном сечении. Размер нематод варьирует от нескольких миллиметров до 10 м (у китов). Нематоды раздельнополы, причем самки, как правило, больше самцов. У отдельных видов нематод резко выражен половой диморфизм. Так, у пред* ставителей рода Tetrameres, паразитирующих в железистом желудке птиц, самки имеют чаще овальную форму, в то время как самцам свойственна нитевидная, обычная для нематод форма.

Кутикула. Снаружи тело нематод покрыто плотной кутикулой с поперечной или продольной исчерченностью. Кроме того, встречаются нематоды с гладкой кутикулой. Нередко на кутикуле различают шипики, гребни, сосочки, латеральные крылья и другие образования. Структу-ра кутикулы в целом и ее отдельных элементов, а также строение головного конца тела, пищевода, вспомогательных половых органов самца, расположение вульвы у самки имеют большое дифференциально-диагностическое значение. Под кутикулой находится тонкий эпителиальный слой и хорошо развитая мускулатура. Вместе они образуют кожно-мускульный мешок, в котором расположены органы нервной, половой, пищеварительной и других систем.

Органы фиксации у нематод — губы, ротовая капсула, кутикулярные выросты в виде шипов, гребней и другие приспособления.

Пищеварительная система начинается ротовым отверстием, ведущим в пищевод, затем в кишеч-180 йую трубку, заканчивающуюся у большинства круглых червей анальным отверстием. У многих нематод ротовое отверстие открывается терминально, и лишь у некоторых оно обращено в дорсальную сторону (у анкилостоматид плотоядных). Ротовое отверстие часто снабжено добавочными ротовыми и околоротовыми элементами: у аскари-дат, спирурат и других нематод окружено губами (2—3^ 4 и больше). Нематоды, не имеющие губ, снабжены ротовой капсулой или ротовой полостью. Ротовая капсула, по-видимому, служит своего рода присоской для паразита, в то время как различные хитиновые включения (зубы и пластинки), направленные острием кпереди, предназначены для травмирования тканей хозяина. Глотка имеется не у всех нематод. Пищевод является мышечным органом, ведущим из ротового отверстия или глотки в среднюю кишку. Чаще он имеет вид трубки, цилиндрической или булавовидной формы. Средняя кишка переходит в прямую, выстланную кутикулярным слоем. Анус у круглых червей чаще расположен на вентральной поверхности вблизи заднего конца тела. Иногда он открывается терминально. У некоторых видов филяриат анальное отверстие отсутствует.